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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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+ C# r* [# M% k) P$ E  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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" j& E  a; G* Z  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
' K, e) h& E, g' Z- VAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
  x9 n; R) b' ^9 u  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus + ]. M: c' B, v; q, Q0 i
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 + A# ~7 ?  W0 ^! Q9 G  a5 l
1 材料与方法
% r# g0 m" U6 _1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 + g9 ~1 \! a$ {6 R
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 $ `" w2 |7 M6 l
2 g& b0 b; Y& ^

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165
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- n- v1 Z5 |) b* z7 F% H表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 * d* R2 s0 U5 B5 J7 x1 k- J
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测定结果ρ(油)/(mg.L-1)6 l: {. I' l! U$ C( {& z, b' n9 E
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)6 K2 u; P% _; B- X
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1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 , F& O* P3 q) t) h. L9 W
2 结果分析 , t' y( j# Q$ b8 y3 |0 @
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 7 {8 M3 Q5 r5 c. ]3 Z. G- M" }
表3  4株机油降解菌形态特征
0 N& S5 v, l2 P# q7 l1 u4 B: w+ B; x! z1 Z

6 m, m& I' S  U/ n
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4 s2 {) Z8 _% W' D: ^形态特征
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菌落颜色7 d* A! b' B: M2 n/ \7 {! R
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5 U8 l  f% g4 ?- z7 ~淡黄4 ^2 O& H) e! w6 v+ U8 l
淡黄& a1 V8 q8 P3 j  j" X
粉红
7 o' }+ i: O4 k* f: N% S2 }; m4 g  g  j$ w4 T
菌落形态
4 Z+ c' N- c" N* \2 o不透明,微隆起,全缘,
, t2 v' z7 k( n( ?半透明,圆形
: \3 s  e3 y7 Q* p: P半透明,圆形,隆起,
% F' ^3 t" v# r. F不透明,米粒状突起,) A% b5 {; n- [( ]

$ R7 S3 [8 T/ n0 d& @; D4 ?% K6 e) ? ! G9 o# a3 n* p# g
光滑,有光泽
, T/ T  x5 r; x. h  p光滑,较干燥
8 |, A6 q9 J) V6 v: h光滑,有光泽
4 b5 ~4 o: \& Y9 L5 ^+ u9 S较湿润
. N5 o6 N/ R! u* q. v0 V: M$ c
' _  j# Y4 a5 {菌体形态
. N9 p8 b4 h! v" Y9 _5 \$ }短杆
% |6 E% u: W6 c球形; q+ r- \( |) u) I- w5 ?, J5 U
杆状
* o- J% p) a' K9 H+ U! S5 L丝状
, B' W% w, ]1 r) K  k7 G, j7 ~
; I/ P! Y. C5 u; a8 x菌体大小/μm5 C" Y. o$ j6 W1 x* F: _7 G, L
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)) B& L6 ]" M9 Y# D2 x& C
Φ0.3
; E" \8 }* V1 _8 d  |& j5 [(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
8 h! e7 k; u. `8 h0.2×(6-60)4 t" s0 u+ U; t* b7 R% `. n
; o8 l/ |2 r) _% R. M; A: U
革兰氏染色! U4 X* z8 `) ^" N* l
G
" S- E& M, {2 k5 h$ }G* O) ~) a9 @) G
G
, L, D( Q& ?- n7 ]! g4 hG. k) B  L* R9 {, x2 \& R! p9 i' g
+ M" e2 c" }: K: A' I& |
初步鉴定' {6 B. z1 \# z0 b" q8 P- r
黄杆菌属
! I, K% b  f( V- g微球菌属
$ J/ |6 Z' c5 R0 r3 [4 X假单胞菌属
3 s  H% u8 b1 L" z* q1 a酵母菌属% k' x' l8 k& |! ?7 J( \
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论
2 l3 V3 ]3 g$ I! a9 G+ _  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。2 n4 K+ G7 ^1 n( A* @7 ?3 O

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