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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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7 s+ p7 t  }& S$ n4 ~* Q  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03- i: T/ O  s: j, ~( _
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- r3 G+ G7 G5 M$ ~" y0 N  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03$ l' I4 {$ d$ v+ ^# t- d
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) 7 T8 d2 z# t; l- y3 h5 L# m
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
: Z1 X+ G/ g( w; u  O  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
$ n3 c, z1 k* T; V1 材料与方法
( U: ^& q! x) b- x% H, U- B1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 6 z' |9 i  p0 N8 L
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果
+ e  i! u; y5 U1 A) V* B( |& Z2 R6 G$ r
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+ A4 |# E* E4 R+ f* C' e' v5 A  K; f# I
分组号
$ m% @: N, U, ]7 ~因素/ w( g3 J) E0 W1 J
测定结果ρ(油)/(mg.L-1); v( E! T5 C) x* L& Y0 q" b
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1886 l2 L" X$ p; r9 r; L' N; W
171
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# D- n6 U7 e' c2 Z1 s* m182, B) b6 o$ n/ o7 Y: @% H
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1795 w3 R8 J# n: M& q2 S
 1 I$ H0 K( W+ X0 g# J
 
$ p3 E2 K2 X( L0 W; Z2 B# ~! @' Y5 K6 }
K36 G$ j1 Q! x$ K" V2 b6 n
1022 ~* H5 u. K9 W; k8 O' q5 y
144) M- L* z: e; P+ w0 j, {0 n: y$ R
165
! Z1 v) L; @$ W; v 
( B( q4 x: u+ M, {9 Q6 } ! d4 V6 x. s: B% g

( u3 S$ G, ]: y) y& [0 S9 \R# `; `5 x2 m" F% j4 V
128& b; S, b; Z, t: D: k5 n( T
44. S. A! |1 g1 v; ~
14; d/ u  m5 W9 x
 
4 m( L' j# b9 W+ Y0 x+ b , k, p) G+ Q4 y
表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 * R. r5 D9 W' q: F

/ l7 [9 U  F& U# O3 H" [9 |# O. N% Z9 E8 C8 U" ^; B9 j

& x/ a& i0 b7 j7 i! k7 J9 n, m% V( H/ l$ R( w2 z" }. X
分组号) {! S" m$ S9 g( h; |
因素5 T/ e' m3 i& d3 @% L
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)1 E- y0 Z& a+ t) a& q
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)2 v0 j  S5 w+ w, H) N
: l- x2 f; L5 n  X) ]$ C
温度/
, N/ S& N* b! ?9 ^ρ(油)/(mg.L-1)
( `( z6 ~) N0 w. s. R: ]- m1 ~pH值
2 k, Z& M0 i  w8 l2 w  C9 r/ F: |! n' W& Y9 [+ H: W/ F
1
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2 q7 r3 \8 W1 l8 N4 E; ~& d4 U368
4 k/ \+ S4 U% O- K4.0" Y3 D6 e% C( t
69
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2
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7 \7 y9 B; X! t2 y4 M6.0& I0 E2 d' M$ J( Z' _8 G0 D1 Z
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+ _) j1 ~. a3 }" P) E0 ]
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3144 f2 ^+ Z5 d# J; D0 c7 c2 N9 b
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35/ c3 S: h9 f) h! H: |
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226
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897+ u& L; }0 e0 s
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+ D+ W" y5 C2 `731 s3 B, \& J* G5 b# @% Q
16
% K* Z: I, M2 y: {& S3 K25! t. B+ d) o& M0 q' y" N
 
) w3 I% f7 T( p0 e# k/ c 
5 N* ]6 v, B: d6 j3 M/ Q* J+ |1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
) I9 U7 u- y2 y2 结果分析
$ T0 @0 e. D* ~& C$ K6 {4 Z3 m2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 ) v3 m- H. ~6 O, g3 z& \& E; c- @
表3  4株机油降解菌形态特征 & R: H+ P, n, _0 b* V! O( b) k

7 x/ T: W5 v& i5 B7 m9 V6 m$ |5 o& N3 `8 V

& g8 @6 I7 ~+ B2 c& y- v) m- F: T7 P) `/ m0 e% k9 j6 Z+ i
形态特征
1 i' A! A  F, M1 n8 D  v- TZL1
& V0 l9 N( p: x; [, K$ IZL2
4 F+ O, M- t- U* W, Y* X( |- ?ZL31 c- G5 }2 T+ s) J9 Y; S4 Z" G& j3 ~
ZL4
- i+ H# c: [$ x' Q8 v4 ]9 Y7 R! ?
菌落颜色, E0 O8 M) ]) s( r6 y+ c5 l
粉红% R& M3 S, H7 ^! b
淡黄4 t/ U4 e# x9 }
淡黄4 u5 e( a4 t% u7 K- T5 N# B9 A
粉红4 W0 r( P8 E0 r7 Q; P2 F+ X8 A7 e
& a& h0 a2 V, w4 p, N- l
菌落形态6 @. Y  l6 F4 E# n/ r0 \
不透明,微隆起,全缘,
6 h% `% Q0 ]! c2 @, j5 r) E% x半透明,圆形
. ~' D, \1 e$ _0 G1 q半透明,圆形,隆起,8 S2 s3 K8 D" U: w- G
不透明,米粒状突起,
4 w; ^8 O  G7 T$ F0 Q3 u5 {7 h: x  i4 k0 ~, {
 7 K3 F1 F1 N4 K
光滑,有光泽
2 B, }7 v2 l% v0 S% j% I1 H光滑,较干燥# v% n) E# @; E3 [, s7 n0 T$ F
光滑,有光泽
) _' l/ B6 G+ r2 R; N+ f2 A1 R2 J较湿润( K! }$ T1 F$ o

* n7 ~8 x% w/ z! h( w  C) O菌体形态
5 M$ X1 K( K- @: h& j短杆- K8 B9 J  Q( o, m, s* f2 H" N
球形
$ O0 R# H2 r  z& S杆状
. z) ]5 ~9 u( E+ u# F丝状
- l4 \1 B) l' Q, k, R( R, g
( V9 C$ p7 f$ K  p! c5 B& J菌体大小/μm3 o; q8 H5 \; \! W- [8 b
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)! F3 k: s# b/ c' y: Q# Q; t9 \2 ?8 n
Φ0.38 F/ p# @0 A. b) u4 h
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
( z$ T( n5 B$ |0.2×(6-60)
6 m0 x' ~+ ^9 X% {, v5 l, J9 f5 `3 A$ t/ Q4 P
革兰氏染色
: r/ }$ f' z( t7 RG
  p% B' B6 W; p5 @9 q) eG3 p% i! l- K' t9 L) B3 T
G
6 y6 [, {' \3 r* B6 H: Q7 T  lG7 b6 d- P' {6 }
3 r: b0 [& P" r. k/ F; b* q
初步鉴定
0 S' G* |3 j1 N' k* M/ X1 n黄杆菌属6 Q3 Q) j0 g* N' J1 M: D
微球菌属
. D. W9 s& F" q5 o; n  U* A5 t假单胞菌属1 }; V/ `. r4 M; N' F
酵母菌属
4 D; D2 |, Y& G& M6 i2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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- u6 V1 j) K" H5 h9 D- z" j4 h3 结论 8 ]# [2 H7 f8 q6 V( D/ i) J/ j
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 ; }7 _, F/ K3 q( X6 Q
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。1 m' f0 n2 E# R7 ~; i

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