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中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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& f' R# _" _. i 中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03& G% L% h* j5 J) u t. \( e
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
( t" V. ]- A6 ~' p4 T) t! \4 Z2 L5 C Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1. Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
0 F, C# V& u9 S) [3 D 近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 & L. S/ t" o, l; W! b0 m" i
1 材料与方法
, V0 W# ?& g) k& x6 @8 \1.1 土壤样品 某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基 本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下: 1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。 2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L. 含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养 称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离 制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验 在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 9 ]2 Q5 H9 s7 P. A. V
表1 ZL1菌株正交试验方案及试验结果
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9 g/ R& h. X6 }! q1 D% d) Q9 R( R: h0 f. |
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分组号& E4 S; Z' e5 V2 U A2 n
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表2 ZL2菌株正交试验方案及试验结果 " N# _+ T7 o( d0 i
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分组号- \& P# `8 y) e& @7 l
因素! t0 ~) W6 l0 @( U7 a
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
$ f7 o- h( s1 l% t降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
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163 d" W g$ D. c/ i2 P
25
( z+ r9 A) f7 g% F: d 9 g( z: c# h& f# b: N- T' ~6 B
( l# z z7 z3 T8 Q$ u1.5 降解能力试验 配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法 用紫外介光光度法测定。 + R% n) s4 E# l
2 结果分析 * m9 m! G) C7 v0 ^& C! k$ k- R
2.1 优势菌筛分试验 富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 2 E; G" G! A o% G4 K) m( ?" L/ a
表3 4株机油降解菌形态特征
6 [$ N1 z% c2 c
) z) a2 Q& W1 Q. R% J* O9 Y2 a5 L
2 G8 z- w# H2 d" J$ I4 R
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菌落颜色9 f0 ]2 V) \( Y$ G5 g( W
粉红0 ?# U1 Y* y) C4 Q
淡黄
4 Q4 p( O/ ?! z4 O8 E0 x, M淡黄* g8 I# I! a% E/ C$ ^
粉红
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菌落形态
% B# X0 A! d) W/ @0 _不透明,微隆起,全缘,
# J7 E" a! I% E: I+ q q8 C8 S半透明,圆形
6 ^' J& g& f B. p% O2 ?# i8 t半透明,圆形,隆起,
+ a/ h& A# p# @' Q不透明,米粒状突起,
1 }# K! \2 N/ X4 C* H% w
; i- H. e3 P& r2 R F S: O- p6 F
光滑,有光泽! P9 j2 k8 z5 X% ?( E6 n
光滑,较干燥
+ u; m: d, k. I9 U% \2 M' z光滑,有光泽
' J7 [5 s0 `0 B) ]6 x, t- _# q较湿润/ l4 G, H# n9 i" p3 G8 a
# E2 ~7 F! G3 O+ A J; i! }0 f菌体形态( q6 e7 I+ Z/ B) V. V/ t4 H& W
短杆9 I" `. b4 |3 D# V
球形
! w/ k8 F; x+ J/ @杆状
$ f; G& c! A( W1 W, q( }# K0 Q丝状
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; O l2 A) _; P- |2 X- S(0.3-0.8)×(0.6-1.0)) v6 t4 f2 c; X4 R/ Q
Φ0.31 l- E: F. t$ O ]! J: ~
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)% b* f8 R" ~: [0 {4 c+ q b+ Z" [) r
0.2×(6-60)( L& d/ D( v2 h
3 ]1 c- F/ T/ `, a! j; d/ k3 \
革兰氏染色
/ K3 }4 G/ j+ U1 w$ ^G1 A+ [5 z2 _6 z: j! G* F4 x
G
, j; K3 B! Y* i8 |7 u3 X' kG* B$ M# T6 D) o3 H! A
G; k2 Y- S' h, i, A3 j1 o
% [( z3 x8 A4 i初步鉴定# e4 c: ?) i- P( L: [1 }
黄杆菌属
3 o9 N( L+ y2 n: V" `微球菌属
! v" P$ C9 v# E" b/ `( F. Q假单胞菌属7 b; M7 Y6 f! w1 s& z f
酵母菌属
( `' u5 o" h- a+ {1 s+ P; Z, N2.2 生长条件正交试验 ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验 向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 9 |8 k9 b- o5 L* z$ j6 R2 J9 B" a
8 T. r# s0 P ]+ x; s3 结论 % h9 s2 ~- {) _) G5 y; t% K4 Y
①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。 ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。 ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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6 R1 O0 h- Y/ ~$ t8 u1 y: S 作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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