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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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0 M* k% X  n0 S# \  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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2 m0 j, u& R: t( o" v! J7 T4 N# Q3 l  ^1 R

! J9 T0 H4 _7 Q, f' @' G1 l5 K, K2 a  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03" Y8 {* Y0 f3 q1 y6 Q! O
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) 0 \3 F% Y$ O4 E. Q
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus : H1 U6 r9 M- a1 \3 z+ h6 I2 a1 |
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
. ?! H, `  m8 V, _3 G1 Q) P+ y1 材料与方法
4 F* l3 h0 t/ t- H) H* y- ~1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 & D( @/ `! L& ^" z( B
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 " J' W9 X2 v& s

/ j7 m+ h; i( s! ], d6 w8 F: ~# U

# P9 G8 p8 E* X9 g  ~3 R0 @; A( v$ t, W
分组号
) L( v$ Z5 [3 X5 l- D; b5 y因素  j  m, E* M" c* n3 L6 a8 p
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)1 ^) y* g8 v4 ^7 O$ Y& Z* [
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)% ^7 |2 e6 |3 T, w
7 W7 B. @- @# g. ^
温度/3 R: v5 s1 D# e: E/ q2 H; i
ρ(油)/(mg.L-1)
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170) s: t: |$ l+ Y9 b. ]+ R! C

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548
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- P. h; ?5 @# C
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433
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171
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2 i8 |( _% o# `$ T% p( T! {9 J5 r; |4 [; T3 W
K28 B  C9 Q/ ^# J+ k4 a9 _- n
182$ ~' F8 ?- p0 m* _
183
% V) H5 a1 I; M: Y% ^$ [2 u179
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3 @  x7 h2 ^) d+ b & l$ l, P+ w4 ~
* C$ \$ l4 D( V. Z% e, J3 Y4 p
K3
) t  x6 O6 `+ |8 q: d/ O# x% A102
3 Y# z6 E; I: _144) ~3 g9 M% d) \( K* W
165
) l- z* D  ^- G4 q, q! O+ k 2 Y! y" F; O9 T1 ^) Y. k$ D6 n0 @
 
8 O$ B' C. W6 e9 j- o* Z0 I* M7 E% |0 @. o
R
. W, Y+ R5 A* x0 |128( A2 a. z9 o( F  V0 q2 p7 H, X
44- p( A9 z2 y4 p1 Q. X& m
14
5 \$ v: }+ h$ a2 K 
" ~3 z) l0 S) p % [6 g6 M9 w/ V
表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 7 S. l( q! {# W& z* z6 @
/ v( Y# R* M  ^3 A- A
& r6 x7 X, G2 u' Z+ J9 q$ [6 }
) u. g( p, I. j

1 w! V- [4 b5 J2 f; j2 f) E分组号
: ~2 s$ f% L  R因素
  d  H, ~4 h" Z- i" f+ H7 n7 W测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
  W" o- E4 s' {0 E" e6 p2 c$ e+ Z降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
5 I9 V% _1 T4 s9 u4 v) z1 B$ _, H6 u, h6 ~; Q: g% k, A( V5 e
温度/
! `( Q; W; f! H- L4 f" p7 k8 Fρ(油)/(mg.L-1)
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5 @) K. `! \+ P# U5 f7 A
0 b) v6 ^; z8 i6 o3 t1! }. T3 I* p8 A" L
252 i3 Z+ d  x- \( j
368$ l5 O( o, U! U1 I
4.0
8 X) o, q2 _0 z6 i69
( S" Q  m  M( Z  t) h) b2998 F- n4 d$ [  x, E9 Z

: W1 t! m( L% |% A2
. V+ W& w% Q1 h3 q25
% {  Q6 O; `- S$ q5 f+ g- ?0 D# @574
. Y& ]0 i- j8 v3 {: P( N6.0
% k! b" W- h9 A' R9 x$ k) }267" t5 n. p5 J' ^1 r2 q% U2 U
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303 Y" z# K$ T0 _7 X  }% `
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" e9 B5 H0 D  U1 u, e& H8 I0 p3 H   w! F/ Y, b6 J! G0 k

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( a3 C3 f3 w; h$ e, V1 F+ w; h275
1 E" b. ?- \1 s- {: n4 T4 @6 S256
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271$ G( C+ T2 f4 O) s/ q) ]/ p, R
2645 Y" {7 d3 I' B
 8 ~" {, r% G; [) ^! y  A
 6 C5 s2 Z& M) D* }% v

. p" E' n9 D+ `* n. j' o. JR
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16
1 u4 n$ R) _4 y, k251 T2 Z3 Y: a) c! Z* C" L& e/ r
 0 R. K3 r4 j4 \6 L0 L2 [
 
* {6 T+ u6 O2 U5 }# k' h1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 : j8 W, |4 P/ w( z3 k
2 结果分析 / V/ Y+ ~* q6 Q( o* C  l
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 ) o# h% ?3 K) k, }, g
表3  4株机油降解菌形态特征 ( j8 R4 S) ?1 k1 [) c9 w
. l! s: P' Q# m  v: W
. p/ ~9 J) ^; s* K& D' H

9 D* V" d5 T6 X
* J1 j' r, _/ n# h. V形态特征
8 t+ Y+ P) K4 ~& v, z4 T9 u( \ZL1
1 o7 W  I: l9 Z; @# ?! n/ D1 kZL2
) J% w7 F/ K$ |ZL3' A' H. {2 t: r, [  t
ZL4
$ {# r( |5 _0 l4 z4 ]) ?" p! E1 {! j1 J/ ^+ Z; [
菌落颜色' v8 j9 R2 C/ a& @; b# m
粉红8 g. r* r- E9 Z
淡黄
5 D. n  Z+ O. {' k淡黄
& w8 |) m( y& c' D粉红9 |! `" i9 h) l3 T

7 B2 A4 Q0 \; e3 S' @菌落形态4 ~- k2 S7 ~1 O: R: C& g/ K" _
不透明,微隆起,全缘,+ ~4 g+ j+ O: L; I
半透明,圆形
* L* m5 \0 R" w' {$ x5 Z半透明,圆形,隆起,5 v' \) K/ ~0 j* z
不透明,米粒状突起,: P% ?. \; A* g) H' c$ L
6 ~7 s0 E% [  O
 
/ T& N) J9 v  D+ T. Q光滑,有光泽' j; H$ F3 u# y6 R3 L+ M4 M1 w
光滑,较干燥
6 p. C1 q" Q" z; J2 r" F! K光滑,有光泽; ]+ S" Z5 I# t2 v, ]. Y7 x, I
较湿润6 f! g! y4 ?% [& o6 K0 b! y" X
& D" c- D8 |* m' b$ e  n
菌体形态
& @- w' J$ e  a( S/ {短杆
  Y6 \) G2 N) J* p3 Q* f球形
# D5 h" E- Z( Y) d- G' e8 l杆状, R) q  {" I. Y: Y8 A
丝状
/ d$ f4 c; |' A  {% [+ u5 g/ u, x' v& m; v' _0 H- V8 o
菌体大小/μm$ L$ r, j& J4 _; k2 j4 X- q
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
& Z9 s0 z; L0 S8 y) HΦ0.3
% [) u8 l1 T3 m+ v2 A0 ]  y& [: l(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
! E- f5 k# @2 T3 l4 x4 A" X- E( r0.2×(6-60)
2 [  t. M! m' P9 V! q
' F9 H8 R2 v( i革兰氏染色
8 i" I7 D3 B: j* s2 p% W% \7 P# `  wG
! k) \. m$ [% q3 r# |G8 v% A! P6 @9 A; z
G
5 @7 d2 i6 R" u8 e5 l; e8 t  ?/ i0 F/ IG
8 v0 k$ l( y& S& q3 D& H; u3 l9 @+ V6 p0 R& o. T2 B9 m
初步鉴定% Y) @% b, X! p# P
黄杆菌属! H: m; n4 w) `2 j
微球菌属+ E- A" H8 w9 _  o0 ^1 f8 v, n5 h
假单胞菌属% j" w* R- G4 }, a8 ~. d% _5 K
酵母菌属
" e0 e- e- H( Q2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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# h7 Q/ e6 y3 z, R/ Q( ?0 V3 结论
3 i# D3 N6 m' B  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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: G+ I/ O) _4 j' P3 L+ {1 \  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。+ G) i8 R8 C* u: {8 w) p
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