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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03- D; D5 Y" }: n3 V0 B
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) h+ d+ Z- k# ^" Q( R0 q# d! ]( u  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03' [) R, H( H: E6 D
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)   h* V2 W0 H) m% G- h
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
' E' x- o) _, o. W4 b2 u' |  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
+ [5 |4 x0 D+ A! ^  F* S7 q1 材料与方法
" L5 ?( T" a2 G3 j. v9 G1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
6 z! U  \) K' H) z3 y7 V9 q# q, u表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 4 g1 W% Z- X" [1 e8 g. J) b
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降解测量ρ(油)/(mg.L-1)! Z/ R) t, N  g3 ?5 s

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144
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14
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+ p) _  r( j) s- u4 f- ]' V * b: x1 K, h- h" T' j8 D3 C
表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 ! n3 Z% o0 o" ~( S; i; F' }

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. ~: Y* l1 G2 S, v
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0 e; w2 v" n+ y0 x3 C. u2 }2 h测定结果ρ(油)/(mg.L-1)2 ~1 m+ Y  k7 }* h. ^
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
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25" n$ H( |, Q6 ~" w
767
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( n# j& g& h& b2 N1 o) _$ |9 q25
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" ]9 `; ~+ n3 t. E ! B- _8 p; i' j3 |# Z
1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
" F. ?* f/ d4 U7 e% j" Q# w2 结果分析
* e+ D+ ?2 E9 V: M+ I5 ^2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
: I9 ~5 r. {( Y/ Q/ e* [表3  4株机油降解菌形态特征
$ `* W7 B9 G5 _$ p& \/ t) L
- }/ L7 Y/ K' m* }( `
# c# d6 V8 A; O- m/ }! h. R! {" v; e
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形态特征
# _0 h5 J6 Y7 N" Y  ]# }ZL1* Q! y7 u5 {1 d% k( Y" W+ b
ZL25 k& a; `: i# F; R
ZL3
. H: V2 J1 _. R# h5 C! f! a7 M. V- JZL4& I- r; i# g5 |& ~; Z3 h2 M- a2 e
# P. Q( \  C. I+ `( g- k* `( s1 D- }
菌落颜色0 o  W* i3 h$ S* n$ g" }
粉红3 B, H. M1 L# M9 [9 o
淡黄1 M. W# Z) l* }2 a  ]# l
淡黄
3 {* v2 m) {! [. {粉红
$ _/ v# n2 T4 H( n$ o0 p1 c% L( U) l" u2 T# ]; I
菌落形态% ~2 Y' G4 V6 {
不透明,微隆起,全缘,
( ]4 a: \4 q6 L. R" Y) E半透明,圆形
. l3 j, |+ _% a+ O半透明,圆形,隆起,5 \% e$ ^" ~3 {2 a3 u$ M# C, \
不透明,米粒状突起,, |; F0 }3 F1 i/ w* s

, H$ v1 h& ^2 x8 E, | . g( Z6 M4 Q5 c4 |/ R  E
光滑,有光泽/ P  o9 k* r! X
光滑,较干燥" m  C2 R3 q; }* e# |
光滑,有光泽9 v, d2 L/ Q4 t3 [6 R& x
较湿润+ }1 b& T; Z* w5 c
/ z. i# C4 N0 u( C  q( u
菌体形态
! A/ m5 D& Q: W短杆
" \9 u8 X7 N% |* V球形/ ^* u4 N- y! M9 r1 ?
杆状
$ d+ G/ f0 _- Q0 {& ]丝状! i8 k: A# \) c% l/ Y9 h
, {5 I( W1 B, L+ ]) c' B
菌体大小/μm0 P$ v5 X; O( v( d, Q" @
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
3 ^) Z2 s$ n4 K$ X1 EΦ0.3
" g1 D) A) @; b8 {- r1 G6 q- x: `. O(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
" k! R% g! f' I0 @0.2×(6-60)
' D& I; d4 i9 F. R% n6 r2 [2 Z( X- j1 F$ C; A7 h9 B# p% C
革兰氏染色
2 m' H4 J$ h* v0 |' `, @; \6 P5 P5 WG
6 Y! C: k+ o/ e9 h9 {G
, f1 r6 s- Y# EG
1 r8 k' B: W9 [  i/ W  A3 B! M% }G/ M  K* {, G: Q! h1 c8 o

9 P6 ~0 P+ U; n$ P5 j/ O2 a) k初步鉴定
, a+ u5 E8 c; d8 |2 V3 M$ p黄杆菌属
7 J* r5 |6 _8 W- H& M& r微球菌属- @7 M3 ?3 k4 U* z
假单胞菌属
% ^0 a' h. {# t+ a+ w酵母菌属. H8 {! i& B! E/ o
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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: |$ G0 I/ J1 G7 y3 结论 5 @& W" A2 q( ^6 @
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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