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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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- O# X( X5 D7 Q7 d0 `! [  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-035 _" t( x: b7 U9 {4 C& s: U( D9 j
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
# h4 E' c: w; d  A  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus : {0 q6 N! m, P8 A+ Q: h8 n7 v
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
5 K8 L0 L7 \! t+ J; {+ D6 U9 c/ J1 材料与方法
: R$ C( T$ H6 A, E  Q1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
' U% X7 V' g7 T* A( h& o; W表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 % j# f# N( G' o2 m/ w* C/ A* o& h
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128
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147 }3 R0 r: B& O- x9 M! N
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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果
% }! D& z/ G* V, |, j# l- c! N6 L, X

# x8 N, j# g+ q3 a
! Z$ r5 w7 W! L3 o! G) O" y# w. V* q& l# H5 W4 C) E
分组号+ H# [3 {2 V$ a* I* o& ]+ Q
因素
% I6 T5 S0 r$ G% @测定结果ρ(油)/(mg.L-1)% Q; m9 h# h0 f, J# I, H
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
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1 w/ n  n# V- p; c; k: z 1 I; Z; T6 f2 C! v* I6 \( d
1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 / Z0 q* m+ s/ t8 L8 n' A; m+ K! Q
2 结果分析 1 d1 x7 ^' f  w$ [& k- P" ]) _
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 4 k7 w& g- j) o0 n  b9 F  G
表3  4株机油降解菌形态特征
  `4 e) ?1 K* x- j# e" f4 {. L( e. |, R0 h* b' n

; I2 r+ {3 G+ y+ b' F
6 ^) Q( N9 R; f1 f+ J5 i7 }! W& _6 G8 m' A
形态特征
5 Y1 f6 @, E& n5 C" g$ JZL1
) y  i( t, C( t3 B  O7 s' F$ L, VZL2
7 y9 Q! h# M$ W' j8 l" x2 XZL3
8 l1 {- e! F/ L1 D7 x  E$ L  M' DZL44 g) }% D0 V; |) P/ u* S
$ G/ K( E, ?% u6 x* A9 ^$ L
菌落颜色7 w( H2 l$ h% p3 N. W
粉红' B! l2 |0 ~- N0 l1 e4 S
淡黄
1 A3 U0 t; |; X2 v9 S& }8 D) b  w淡黄' G$ n8 E5 T  l
粉红9 H# Z' ]4 U5 Z8 X. z( }+ L2 f& g

9 ?# y9 i% s; v1 v. \+ z; J菌落形态
7 I3 }6 x! t$ Y3 `( o不透明,微隆起,全缘,- a  w/ J; f% ?$ p0 S
半透明,圆形
8 q' }2 _1 `; E& h1 E* a! E/ r9 N+ |半透明,圆形,隆起,1 p8 |0 M# l: N- H2 h/ D6 ]' q
不透明,米粒状突起,
. l( M3 l, R: y8 V2 [% N& q1 b* x# y, z
- J( [& B$ ]% U% h8 v+ Z 7 f, U& V+ w+ Q5 @! p& T
光滑,有光泽
& t+ s, l) X/ k7 e" K光滑,较干燥
  k5 v: j& }- L7 A) `/ o. H光滑,有光泽3 B& [) U1 `# `: ?9 o) f! z/ O
较湿润
6 v! [9 m9 j/ D+ q# N. `% `+ L& F. N9 B& ^1 w+ V; E. g. ?
菌体形态
+ T) ?( V6 K; ?' u& {  ]/ D短杆4 t' N: z: ^! l+ R' }
球形% x6 S5 i! a! P: Y) ?
杆状
- D" \% T% E& \- }, E% o/ R1 ?# f$ Z丝状
1 E) E" ?4 k- T' X0 C1 ?+ |0 _
7 B7 R9 P' m1 B  y8 ~/ z" e菌体大小/μm% I1 N" i$ E, z
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)6 A6 w! W$ ]. r
Φ0.3% K5 N3 n" i4 ~# ~1 Z& K3 O
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)$ B- Q) m8 e$ [; @6 [! ^/ A1 D
0.2×(6-60)5 W/ h: x; m9 R
* p7 Z/ C# W  c1 ^3 d( o
革兰氏染色
, E7 }, x; p" @. I: X1 d7 y& Q- eG
  p2 v9 G" A8 U# n  P6 eG6 V6 B* p* S/ Y4 f! y* E6 T
G
; O  S/ X! e7 rG, h; N2 S, U0 c8 _  r6 J! {$ @
4 F* ~9 d. x3 P. }
初步鉴定1 t: z* Q1 m; X6 q- M
黄杆菌属4 ~8 A! p* `$ r1 Z, L: x
微球菌属) k  s% N' e  M8 v$ r" p5 E
假单胞菌属
' x. E1 h" K5 C9 u) A! l* K  U酵母菌属3 V' H6 _. K: E# J
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论 4 {; e, n2 |& H+ y7 z
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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, m& h$ S. H( J8 h8 v3 D  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。2 S8 `- _  N1 D8 O* o4 T

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