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/ V/ f) A% ]& ~0 ~# v 中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03) @0 F5 |: n' n
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, X......" T( ]8 I* J- K) V+ |
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中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-034 O# Q# h" K- @/ N" g
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
( z: X1 M3 r1 @4 e# h$ x Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1. Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
4 \# Y' h8 \6 s& a 近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
) J! ?( u F2 x1 材料与方法 4 E2 |' b7 ~/ N% z. p
1.1 土壤样品 某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基 本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下: 1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。 2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L. 含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养 称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离 制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验 在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 * [8 x5 \ ~/ R0 `) K, A" l, ?; s
表1 ZL1菌株正交试验方案及试验结果
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1 C* |! k7 k6 L2 s& U$ O
- k1 {" Q& s0 Z表2 ZL2菌株正交试验方案及试验结果 ' n* H) L( P | n
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1.5 降解能力试验 配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法 用紫外介光光度法测定。
) t" a+ m6 o9 A0 J2 结果分析
4 {4 F6 T5 c! ~2.1 优势菌筛分试验 富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
/ ]8 o1 c* s: F. C表3 4株机油降解菌形态特征 ! P7 e- f& L% W
( M$ S$ Z& ]8 ]
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形态特征" n% q2 P; W7 B2 b9 R8 t0 ~
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0 l* T5 { R( g$ R# v5 w( r5 t0 i菌落颜色
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淡黄5 t5 e! H& m% j8 E" F
淡黄2 v: R, J( A& d
粉红
A, ^) j2 V$ t5 K% z9 w7 }9 Y& U6 x4 u* b% R" I
菌落形态
: x+ q" W& S* q) _5 Q/ i% H不透明,微隆起,全缘,
! _0 {' K$ S6 {! Q# w) x半透明,圆形
2 b9 u3 K& \6 X. H9 o& m% Q! I7 r半透明,圆形,隆起,
. e6 H M$ K" a- j4 l; D2 _不透明,米粒状突起,* u/ ^) b( m. B+ A+ P/ y
* V* e! m& s3 g
0 I! G2 f7 F+ e( v9 y, _光滑,有光泽
8 |/ w5 T, }. D, R- q/ ~ U光滑,较干燥
9 M4 P* U2 A* N. D6 i光滑,有光泽
w8 Q% l: O: O; t' l; ~较湿润! h9 l. g) u1 T6 s( ?0 w
4 n& N" E# E2 A# ~ m
菌体形态5 i: ^8 R1 N3 ?' A! i1 g6 N
短杆
7 l: m. S" w$ V/ x5 }% h3 B2 x# J球形! M" b' V. H7 v9 A4 P4 u' J
杆状
( F6 h% v/ S. b; d$ A丝状% d, t0 f) J; _/ O3 u- x
0 A* \- [/ G1 E9 ]菌体大小/μm
( F8 t# j+ C3 s4 s(0.3-0.8)×(0.6-1.0): T! L9 }& K1 q
Φ0.3
3 |) `$ L/ @+ T0 u, p! P0 ]/ d. n+ N(0.5-0.8)×(1.3-5.0)( x# S u. G+ k. c) w, \
0.2×(6-60)
* Z% y* i% F; c$ Q' ^8 u7 A, ~0 h6 N) V
革兰氏染色
$ F5 ?- e: }, x; V- \& H$ k/ eG; v) I* x5 A' X. T, ], v. _0 s" B
G
& [$ H7 h; K! A7 d: C0 KG
d( a0 v/ y0 u- z9 ~G
/ W7 P( D* Z3 h+ T: f" k' N/ Z9 P+ ` B, P
初步鉴定" g0 G7 T9 f) [8 j( A/ k
黄杆菌属
% c0 Q- r3 M; [3 l微球菌属
, [1 G+ h' b A4 z) I9 W假单胞菌属
0 J; d& d2 v: w酵母菌属5 i/ _& @/ D# G1 w9 D+ h9 d- b
2.2 生长条件正交试验 ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验 向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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. }# ]$ Q1 o; Y, V3 结论
3 c9 r# _' m% d0 t+ h ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。 ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。 ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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4 d+ n/ W+ R' w3 ^6 r 作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。6 Y' O6 r d& F, x) p5 w! R
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